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文檔簡介
1、背景:間充質(zhì)干細胞(multipotent mesenchymal stem cells,MSC)是一種存在于多種組織中的具有自我更新和多向分化能力的多能干細胞。MSC具有易于分離和擴增、多向分化、低免疫原性和免疫調(diào)節(jié)的特性,這些特性使它們成為組織工程和再生醫(yī)學的理想種子細胞。細胞治療中的一個重要問題是MSC替代來源的的可獲得性,而細胞治療的成功的決定性因素則是MSC的生物學特性。對MSC生物學特性的理解有利于充分的利用MSC的治療潛能
2、,因此,MSC生物學特性的研究越來越引起人們的興趣。到目前為止,大多數(shù)的治療性應用是以成體骨髓來源的MSC為研究對象,但是成體骨髓MSC存在骨髓體積有限,獲取標本時需進行侵襲性操作以及MSC的絕對數(shù)量和分化能力會隨著年齡增加而下降等不足。這就需要研究人員尋找替代的MSC細胞來源,同時,研制良好的細胞培養(yǎng)試劑為MSC的生長和擴增提供適合的環(huán)境,從而滿足臨床治療和研究方面的需求。 目的:本研究旨在鑒定低血清濃度完全培養(yǎng)基培養(yǎng)的MSC
3、的一般特性如形態(tài)、核型、增殖動力學、表型特點和分化潛能等生物學性狀,從而提供一種MSC的培養(yǎng)試劑并為MSC作為組織工程的種子細胞提供理論基礎。 方法: ①應用貼壁培養(yǎng)的方法從胎兒的骨髓和肺組織以及臍帶中分離獲得單個細胞,在低血清完全培養(yǎng)基中培養(yǎng),除去非貼壁的細胞、通過體外傳代培養(yǎng)使細胞純化。 ②測定培養(yǎng)的MSC的核型和生長曲線。 ③應用流式細胞儀對培養(yǎng)的MSC進行細胞周期分析。 ④運用流式細胞技術(shù)
4、檢測MSC的免疫表型和胚胎干細胞的全能標志物。 ⑤在誘導體系中定向誘導MSC向脂肪細胞、成骨細胞和軟骨細胞分化,利用油紅0、茜素紅和阿爾新藍染色觀測脂滴形成、鈣鹽沉積和酸性粘多糖合成情況;利用流式細胞儀檢測系分化特異性標志物過氧化物酶體增生物激活受體—γ(PPAR—γ)、骨鈣蛋白(osteocalcin)和Ⅱ型膠原的表達。 ⑥采用兩步誘導方案使骨髓和肺組織來源的MSC體外誘導分化為神經(jīng)細胞,利用激光共聚焦顯微鏡檢測誘導細
5、胞中的神經(jīng)細胞標志物微管相關(guān)蛋白2(microtubule—associated protein 2,MAP2)、Nestin和神經(jīng)膠質(zhì)酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)的表達。 ⑦采用兩步誘導方法使肺組織來源的MSC體外誘導分化為肝細胞,利用RT-PCR方法檢測誘導細胞中的肝細胞標志物如甲胎蛋白(αFP)、白蛋白(albumin)和細胞角蛋白18(cytokeratin18,C
6、K18)的表達;利用糖原染色和培養(yǎng)上清中白蛋白的分泌水平對誘導后細胞進行功能性檢測。 結(jié)果: ①低血清濃度完全培養(yǎng)基培養(yǎng)的MSC貼壁生長和呈長梭形,細胞生長速度快,細胞融合時出現(xiàn)漩渦狀外觀。 ②MSC具有正常核型以及典型的“S”型生長曲線。 ③細胞周期表明大多數(shù)細胞處于G0/G1期,少部分的細胞處于活躍增殖期。 ④MSC高表達間充質(zhì)細胞標志物如CD13,CD29,CD44,CD90,CD49e,C
7、D105,CD166和HLA—Ⅰ,而不表達造血細胞和內(nèi)皮細胞的標志物,如CD31、CD34、CD11b、CD45、CD117,CD133和HLA—Ⅱ。更重要的是,表達胚胎干細胞標志物Oct4,Nanog,Sox2和SSEA—4,其中傳代到第25代(P25)的肺組織來源的MSC仍可保持免疫表型和胚胎干細胞標志物表達的穩(wěn)定。 ⑤MSC經(jīng)誘導后,油紅0、茜素紅和阿爾新藍染色均為陽性,且高表達系分化特異性標志物,說明其能夠分化為脂肪細胞
8、、骨細胞和軟骨細胞,其中肺組織來源的MSC能保持其三系分化能力到P25。 ⑥神經(jīng)細胞標志物在誘導細胞中的表達水平顯著高于其在對照細胞中的水平。 ⑦與對照細胞相比,肝細胞標志物在誘導細胞中的表達上調(diào);誘導后細胞具有儲存糖原和分泌白蛋白的功能。 結(jié)論: ①低血清濃度完全培養(yǎng)基是一種很好的培養(yǎng)MSC的細胞試劑。 ②利用該培養(yǎng)基培養(yǎng)的MSC具有較強增殖能力,可滿足組織工程種子細胞的需要。 ③利用該
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